　　解決方案：增加循環(huán)次數(shù)，但一般不超過45循環(huán)；檢查并修正PCR程序中檢測(cè)熒光信號(hào)的步驟；通過PAGE電泳檢測(cè)引物和探針是否降解，如有需要?jiǎng)t更換；對(duì)未知濃度的樣本從系列稀釋樣本的最高濃度做起，避免模板降解，將模板樣本小量分裝儲(chǔ)備，防止反復(fù)凍融；重新設(shè)計(jì)更合適的引物和探針，特別是要確保引物跨越內(nèi)含子以擴(kuò)增基因組DNA，且上下游引物Tm值相差不宜超過4℃。

　　5.Ct值過晚

　　可能原因：擴(kuò)增效率低、PCR程序不合適、MgCl?濃度不合適、PCR產(chǎn)物太長(zhǎng)、模板中存在抑制物等。

　　解決方案：優(yōu)化引物之間或者引物和探針的比例；重新設(shè)計(jì)引物或探針；改用三步法進(jìn)行反應(yīng)，或者優(yōu)化退火/延伸溫度，可適當(dāng)降低退火溫度，并在推薦的時(shí)間條件下延長(zhǎng)10s；增加鎂離子濃度；縮短PCR產(chǎn)物長(zhǎng)度；使用高純度模板進(jìn)行PCR檢測(cè)或?qū)⒛０暹M(jìn)行稀釋。

　　6.陰性對(duì)照擴(kuò)增有信號(hào)

　　可能原因：引物設(shè)計(jì)不夠優(yōu)化、引物濃度不佳、鎂離子濃度過高、模板有基因組污染、交叉污染等。

　　解決方案：優(yōu)化引物設(shè)計(jì)，避免引物二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn)；適當(dāng)降低引物濃度，并注意上下游引物的濃度配比；適當(dāng)降低鎂離子濃度，或選擇更適合的mix試劑盒；在RNA提取過程中避免基因組DNA的引入，或通過引物設(shè)計(jì)避免非特異性擴(kuò)增；對(duì)操作環(huán)境進(jìn)行處理，更換新的環(huán)境、加樣器、槍頭以及所有的引物、試劑等，防止交叉污染。

　　7.探針法熒光定量PCR試劑盒標(biāo)準(zhǔn)曲線不佳

　　可能原因：標(biāo)準(zhǔn)品稀釋或者加樣誤差、標(biāo)準(zhǔn)品降解、引物或探針不佳、模板中存在抑制物等。

　　解決方案：仔細(xì)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)品稀釋和加樣操作，確保標(biāo)準(zhǔn)品呈梯度；避免標(biāo)準(zhǔn)品反復(fù)凍融，將高濃度DNA模板分裝保存于-20℃或-80℃，現(xiàn)配現(xiàn)用；重新設(shè)計(jì)更好更穩(wěn)定的引物或探針；控制模板濃度在一定范圍內(nèi)，一般為50—500ng。

　　8.熔解曲線峰不特異

　　可能原因：引物設(shè)計(jì)不夠優(yōu)化、引物濃度不佳、模板有基因組污染、離子濃度不合適等。

　　解決方案：優(yōu)化引物設(shè)計(jì)，避免引物二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn)；適當(dāng)降低引物濃度，并注意上下游引物的濃度比例；在RNA提取過程中避免基因組DNA的引入，或通過引物設(shè)計(jì)避免非特異性擴(kuò)增；適當(dāng)降低鎂離子濃度，或選擇更適合的mix試劑盒。

　　9.擴(kuò)增曲線異常

　　可能原因：模板的濃度太高或者降解、熒光染料的降解、操作不當(dāng)導(dǎo)致指紋或字跡污染、液體揮發(fā)、氣泡等。

　　解決方案：調(diào)整模板濃度至合適范圍，避免反復(fù)凍融導(dǎo)致降解；更換新鮮的熒光染料；在操作熒光定量PCR時(shí)戴上新的一次性手套，蓋上蓋子避免任何指紋或者字跡等污染；檢查耗材氣密性，防止液體蒸發(fā)；規(guī)范移液槍加樣操作，避免產(chǎn)生氣泡。